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电泳缓冲液的配制
电泳缓冲液的配制
方法
答:
向烧杯中加入约600ml去离子水,充分搅拌均匀;3。加入57.1ml的冰乙酸,充分溶解
;4。用NaOH调pH至8.3,加去离子水定容至1L后,室温保存。使用时稀释50倍 即1×TAE Buffer10×TBE Buffer配制方法:1。称量氨基丁三醇 108g,Na2EDTA.2H2O 7.44g,硼酸55g 于1L烧杯中;2。加入约700ml去离子水...
电泳
1倍上样
缓冲液
配方
答:
电泳1倍上样缓冲液配方是:
Tris-HClpH6.8(60mM)
;SDS(2%);溴酚兰(0.1%);甘油(25%);β-巯基乙醇(14.4mM)。
跑SDS-PAGE的
电泳缓冲液
需要什么水来
配制
答:
1.配制电泳试剂用水蒸馏水就可以了就是单蒸水,如果条件允许的话,可以只用更好的当然纯水是最好了
;2.一般实验室都会有蒸馏水,双蒸水,其实双蒸水就能满足大多数实验室的要求,纯水才是所谓的去离子水
sds
电泳
上样
缓冲液如何
配置
答:
配制
过程:1. 量取1M Tris-HCl (pH6.8) 0.6 ml;50%的甘油5 ml;10%的SDS溶液2 ml;1%的溴酚兰1 ml;2. 加入去离子水定容至10 ml;3. 分装;4. 在4℃可保存数周,-20℃可保存数月之久。你还可以参考下面这个配方:2×SDS凝胶加样
缓冲液
组分(摘自《分子克隆》第三版)Tris-...
1%琼脂糖凝胶
电泳
中所需的溶液,以及
配制
答:
电泳缓冲液
一般是1×TAE或者0.5×TBETAE一般
配制
成50×的储存液组分浓度2M Tris-醋酸,100mM EDTA 配制方法: 1.称量Tris 242g,Na2EDTA·2H2O 37.2g于1L烧杯中;2.向烧杯中加入约800ml去离子水,充分搅拌均匀;3.加入5...
TAE
缓冲液
答:
按照 242g Tris碱 57.1ml冰乙酸 100ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)是配置1L 50x的缓冲液 使用的时候取决于你的容器有多大,一般用一个2L的试剂瓶的话,就是40ml储存液+水补满到2L,然后拼命混匀就可以倒进电泳槽作
电泳缓冲液
或者配置agarose TAE胶了 ...
tris-甘氨酸
如何
配置
电泳缓冲液
?
答:
所用试剂:Tris碱,甘氨酸和SDS 含量配方:30.3Tris碱,188g甘氨酸,10gSDS,此产品为干粉混合物。用时可以用双蒸水溶解成1L,配成10倍浓缩液,用时再稀释10倍,配好的
电泳液
用于SDS-PAGE蛋白电泳,可反复使用三到五次,如果发现有明显沉淀或者漂浮时,请丢弃换新的。
电泳缓冲液
是核酸、蛋白质凝胶...
生物
缓冲液
TAE
答:
TAE缓冲液组份浓度:2M Tris-醋酸, 100mM EDTA TAE缓冲液配方体积:1L TAE
缓冲液配制
方法:称量下列试剂,置于1 L烧杯中。Tris:242g Na2EDTA·2H2O:37.2g 向烧杯中加入约800 ml的去离子水,充分搅拌溶解。加入57.1 ml的醋酸,充分搅拌。加去离子水将溶液定容至1 L后,室温保存。
western blot 转移
缓冲液的
配方?
答:
我们实验室的配方如下:5X
电泳缓冲液
:15.1g Tris+94.0g Gly+5.0g SDS 配成1L 转移缓冲液:3.03g Tris+14.42g Gly+200mL CH3OH 配成1L 效果不错,你可以试一下
10倍凝胶
电泳
加样
缓冲液怎么
配
答:
10×DNA loading buffer(仅供参考)成分及终浓度
配制
10ml溶液各成分用量 0.2%溴酚蓝 20mg 0.2%二甲苯青FF 20mg 200 mmol/L EDTA 4ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)0.1%SDS 100ul 10% SDS 50%甘油 5ml 补足 水 20mg 到10ml
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