在测序前如何进行pcr产物的酶切纯化,注意我想知道的是用于测序的pcr产物酶切纯化,不是用于克隆的酶切。

如题所述

这种方法有比较大的局限性,要求pcr产物条带要单一,如果有杂带的话测序结果肯定就是一堆的套峰了。
这种方法是采用虾碱酶(SAP,Shrimp Alkaline Phosphatase)和外切酶I的混合溶液,来消化pcr扩增体系中多余的dNTPs和引物,以便后面的测序。一般使用的终浓度为1ul混合溶液中,含有虾碱酶0.6单位,外切酶I1.2个单位,这个比例也可以自己通过试验来调整。
一般是1ulpcr产物加2ul溶液。37度孵育15分钟,即可除去多余的引物以及dNTPs,然后80度,15分钟就可以使虾碱酶失活。
这个方法的优点是简单、快速、省钱、不损失样品,缺点是对样品要求高,如果一次纯化测序结果不好还要重来,费时费力。所以现在测序公司一般都是使用胶回收试剂盒来纯化,这样虽然工作量比较大,费钱,但基本可以保证一次成功,总体看来还是省时省力的。
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第1个回答  2011-11-03
你说的两者并没有本质区别。可以有几种方法来纯化:

最简单的:酶切完成后,做一个有双排孔的胶(也有卖的)。把要分离的混合物加在上一排,然后跑电泳,随时观察,等要纯化的那个条带抛入下一排的孔时,切断电源,直接吸出来就可以了。可以用来直接测序。

或者使用PCR 纯化试剂盒,一般都可以清除切下来的小片段核酸。要注意的是最后一步洗脱液内不要有EDTA (比如TE缓冲液),有可能干扰测序的酶活性。追问

就是用SAP纯化酶法纯化单一条带的pcr产物,不需要割胶纯化,具体步骤如何进行

追答

最简单就是用试剂盒,原理就是亲和柱,再洗脱。

第2个回答  2011-11-03
楼上t说的是一t方6面。 PCR产物测序也x是可以5的,可以8送粗样,也o就是不n纯化8的,也h可以2送纯化6好的。但很多公1司测的不d是很好,所以7一l般建议转到克隆载体中3保存了t送菌液或质粒测序。 PCR产物纯化4是去除多余的dNTP和引7物二e聚体。用纯化4好的片6段连接转化1可以3降低背景,提高转化3效率。通常转化0后我们用几r种方0法来确认6转化7子n,抽质粒酶切3是比6较可靠的。选择酶切5大k小w与z预计4一d致的克隆去测序。lさiㄅh┳拧┑otpy筏ks┞ㄟh┳拧┑追问

就是用SAP纯化酶法纯化单一条带的pcr产物,不需要割胶纯化,具体步骤如何进行

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