请问台盼蓝染色（区分死细胞与活细胞）和结晶紫染色的染液的配制方法以及染色的步骤是怎么样的？谢谢！

Question

如题所述

Answer 1

一. 台盼蓝配制：4％台盼蓝母液：称取4克台盼蓝，加入少量蒸馏水研磨，加0.9%NaCl至100毫升，用滤纸过滤，4℃保存。或者直接用0.9%的生理盐水或者PBS配成母液 用的时候用生理盐水或者PBS稀释 。
台盼蓝染色步骤：
1.、4%台盼蓝母液：称取4g台盼蓝，加少量蒸馏水研磨，加双蒸水至100ml，用滤纸过滤，4度保存。使用时。用PBS稀释至0.4%。（也可买Gibco的成品）; T 　　
2、胰酶消化贴壁细胞，制备单细胞悬液，并作适当稀释。 　
3、染色：细胞悬液与0.4%台盼蓝溶液以9:1混合混匀。（终浓度0.04%） 　　
4、计数：在三分钟内，分别计数活细胞和死细胞。 　　
5、镜下观察，死细胞被染成明显的蓝色，而活细胞拒染呈无色透明状。 　　
6、统计细胞活力：活细胞率（%）= 活细胞总数/（活细胞总数+死细胞总数）×100%

二. 结晶紫配制：
结晶紫 2.0g
草酸铵 0.8g
95％酒精 20ml
馏水 80ml
先将结晶紫溶于酒精，草酸铵溶于蒸馏水中，然后将两液混合，静置48小时使用。此染液稳定，置密闭的棕色瓶中可储存数月。

结晶紫染色步骤：
1．在96孔细胞培养板各孔中加0.1ml含5×104～10×4 WEHI-164细胞的培养液（含10％小牛血清的RPMI-1640培养液），37℃ 5％ CO2的二氧化碳培养箱中培养2～3小时，让细胞帖壁。
　　2．用RPMI-1640培养液10倍递次稀释TNF标准品，根据需要3～5倍递次稀释待检样品，每孔加0.1ml稀释的标准品或待检样品，每个稀释度3个重复孔。对照孔6个，3个阳性对照孔各加0.1ml含4μg TNF的RPMI-1640培养液，3个阴性对照孔各加100μl RPMI-1640培养液。继续培养18～24小时。
　　3．甩去培养液，用PBS小心洗涤一次，每孔加0.1ml 10％甲醇溶液固定细胞30秒钟。
　　4．吸去甲醇溶液，每孔加0.1ml结晶紫染液，室温中放置20分钟。
　　5．轻轻甩去染色液，用蒸馏水洗涤各孔，将培养板倒置于吸水纸上吸干水分。自然干燥或37℃烘干。此板可以在室温中长期保存。
　　6．测定前，每孔加0.1ml 33％醋酸脱色，充分振荡后在570nm处测定光吸收度。用光吸收度（OD）值对样品稀释度作图，比较标准品曲线和待检样品曲线即可得到待测样品中的细胞因子活性

Answer 2

正常的活细胞，胞膜结构完整，能够排斥台盼蓝，使之不能够进入胞内；而丧失活性或细胞膜不完整的细胞，胞膜的通透性增加，可被台盼蓝染成蓝色。通常认为细胞膜完整性丧失，即可认为细胞已经死亡，这与中性红作用相反。因此，借助台盼蓝染色可以非常简便、快速地区分活细胞和死细胞。台盼蓝是组织和细胞培养中最常用的死细胞鉴定染色方法之一。注意凋亡小体也有台盼蓝拒染现象。 　　台盼蓝染色后，通过显微镜下直接计数或显微镜下拍照后计数，就可以对细胞存活率进行比较精确的定量。 　　台盼蓝染色只需3-5分钟即可完成，并且操作非常简单。本回答被提问者采纳