第一次使用前请先在漂洗液WB和结合液PQ中加入指定量的
无水乙醇，充分混匀，加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇，以免多次加入!取所需适量裂解液PL放置在65℃预热，使用前加入β-巯基乙醇到终浓度2%。
1. 取适量植物组织（新鲜组织100 mg 或干重组织30 mg）在研钵中加入液氮充分碾磨成细粉。
2.转移细粉到一个1.5ml离心管，不要解冻，加600μl 65℃预热的裂解液PL (确认已加入β-巯基乙醇至2%)，剧烈涡旋振荡混匀，用大口径枪头轻柔吹打帮助裂解。
如果组织裂解困难，可根据需要加一个轻柔匀浆10秒的步骤帮助裂解。
3.65℃水浴20-60分钟，在水浴过程中颠倒离心管以混合样品数次。
可选:如果组织干燥或者产量低，可以适当延长水浴时间。如果RNA残留多，可在水浴前加入6μl
RNA酶（20mg/ml）。
注：如果提取的DNA残留RNA较多导致电泳时候条带拖尾，条带扭曲，背景很高等不正常电泳情况，可以加1% RNA酶（10mg/ml）37℃或者室温放置半小时即可消化RNA，消化完后不需要特殊处理便可用于PCR或者酶切。
4.加入700μl
氯仿或者氯仿/
异戊醇（体积比24：1混合），颠倒充分混匀几分钟（或者涡旋混匀），13,000rpm 离心5分钟。
若提取的植物组织富含多糖
多酚，可以在第4步前用等体积酚/氯仿（1：1）抽提一遍。
5.小心吸取上清到一个新的1.5ml离心管，注意不要吸到界面物质。
如上清比较浑浊，则需要重复步骤4一遍，直到得到透亮上清。
6.较精确估算上清量，加入1.5倍体积结合液PQ （请先检查是否已加入无水乙醇!）后立刻涡旋，充分混匀。此时可能出现沉淀，但不影响实验结果。
7.将上一步所得混合物（包括可能出现的沉淀）加入一个吸附柱AC中，（吸附柱放入收集管中）13,000rpm离心30秒，倒掉收集管中的废液（先加700μl离心，弃废液，再加入剩余的溶液，再次离心）。
8.加入500μl抑制物去除液IR，12,000rpm 离心30秒，弃废液。
9.加入600μl漂洗液WB（请先检查是否已加入无水乙醇!），12,000rpm 离心30秒，弃掉废液。
10.加入600μl漂洗液WB，12,000rpm 离心30秒，弃掉废液。
11.将吸附柱AC放回空收集管中，13,000rpm离心2分钟，尽量除去漂洗液，以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
12.取出吸附柱AC，放入一个干净的离心管中，在吸附膜的中间部位加100μl洗脱
缓冲液EB（洗脱缓冲液事先在 65-70℃水浴中预热），室温放置3-5分钟，12,000rpm 离心1分钟。将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，室温放置2分钟，12,000rpm离心1分钟。
洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果预计和需要产量高，可增大洗脱体积，如果需要DNA浓度较高，可以适当减少洗脱体积，但是最小体积不应少于50μl，体积过小降低DNA洗脱效率，减少DNA产量。
13.DNA可以存放在2-8℃，如果要长时间存放，可以放置在－20℃。
附录（低DNA含量或者产量低样品操作步骤）：
1.取适量植物组织（新鲜组织400 mg 或干重组织200 mg）在研钵中加入液氮充分碾磨成细粉。
2.转移细粉到一个15ml离心管，不要解冻，加入9ml 65℃预热的裂解液PL (确认已经加入β-巯基乙醇至2%)，剧烈涡旋振荡混匀，用大口径枪头吹打帮助裂解。
如果组织裂解困难，可根据需要加一个轻柔匀浆10秒的步骤帮助裂解。
3.室温放置60分钟，中间不时颠倒离心管以混合样品数次。
如果组织干燥或者产量低，可以放置在65℃水浴。
4. 加4.5ml氯仿/异戊醇（体积比24：1混合），涡旋充分混匀，3,000g离心10分钟。
5.小心吸取上清到一个新的15ml离心管，注意不要吸到界面物质。重复一遍步骤4。
6.小心吸取上清到一个新的15ml离心管，估算上清量，加入0.7倍体积的
异丙醇，涡旋混匀来沉淀DNA。
7.立刻3,000g离心20分钟沉淀DNA，弃上清，颠倒离心管口放在纸巾上控干残留液体，并小心用用
移液枪吸干沉淀周围残留液体（不要过于干燥DNA沉淀）。
8.加入300μl－400μl预热到65℃的灭菌水，重新溶解DNA，可能需要在65℃短暂温育帮助溶解，期间不断轻弹管底帮助溶解。
9.加入1.5倍体积结合液PQ（450μl－600μl，请先检查是否已加入无水乙醇!）后立刻涡旋，充分混匀。此时可能出现沉淀，但不影响实验结果。
10.后续步骤和上面标准操作步骤7开始后完全一样。