一、水煮模板法——主要用于PCR反应
操作最简便，对试剂条件要求低。缺点是纯度不够高，可能会含有RNA、蛋白等杂质。但是作为一般检测目的的PCR反应模板已经足够了。
二、CTAB/NaCl 法
CTAB/NaCl法提取的DNA纯度较高，蛋白杂质较少，保存时间长，编者更喜欢把终浓度为20μg/ml RnaseA加在第5步温育的时候，这样最后没有RnaseA污染。每一步操作细致一些，得到的DNA可用于Southern blot。
注意：长时间保存DNA可放于-20℃，但要尽量减少反复冻融，否则影响DNA质量。
三、盐析法
介于方法一和方法二之间，CTAB虽然取出糖分效果较好，但CTAB本身也是有毒的，所以此方法放弃了CTAB。
实验注意：提基因组最好要将枪头尖剪掉（剪掉以后在酒精灯上迅速过一下，使其断口圆滑）。以免枪头损伤基因组，抽干时最好是风干。
扩展资料：
DNA提取方法
一.酚抽提法：先用蛋酶K、SDS破碎细胞，消化蛋白，然后用酚和酚-氯萃取，高速离心后取上清，所得DNA大小为100-150kb
二.甲酰胺解聚法：破碎细胞同上，然后用高浓度甲酰胺解聚蛋白质与DNA的结合，再透析获得DNA可得DNA200kb左右。
三.玻璃棒缠绕法：用盐酸胍裂解细胞，将裂解物铺于乙醇上，然后用带钩或U型玻璃棒在界面轻搅，DNA沉淀液绕于玻棒。生成DNA约80kb。
四.异丙醇沉淀法：基本同1法，仅用二倍容积异丙醇替代乙醇，可去除小分子RNA（在异丙醇中可溶状态）
五.表面活性剂快速制备法：用Triton X-100A或NP40表面活性剂破碎细胞，然后用蛋白酶K或酚去除蛋白，乙醇沉淀或透析。
六.加热法快速制备：加热96℃-100℃，五分钟，然后离心后取上清，可用于PCR反应。
七.碱变性快速制备：先用NaOH作用20分钟，再加HCI中和，离心后取上清，含少量DNA。
参考资料来源：百度百科-DNA提取
细菌DNA提取方案：革兰氏阴性菌，如E.coli，一般有三种可以选择的方法。
一、水煮模板法——主要用于PCR反应
1、接种单菌落于LB或脑心平板，连续画线，37摄氏度培养18－24小时。
2、刮取1～2接种环菌苔加入150微升三蒸水中，混匀，100摄氏度煮沸10分钟。
3、12000转/分钟 离心10分钟，取上清，－20摄氏度保存备用。
操作最简便，对试剂条件要求低。缺点是纯度不够高，可能会含有RNA、蛋白等杂质。但是作为一般检测目的的PCR反应模板已经足够了。
有人称扩增4kb以下片段都可用此种方法制取模版，编者用此类模板PCR可以扩增到3500bp的片段。建议：此法得到的模版保存时间短，强烈建议每月重新制作一次。
二、CTAB/NaCl 法
1、接种一单菌落于5mlLB中,30℃培养过夜,
2、取1ml种子培养液接入100ml2%LB中,37℃、220r/min培养16小时;
3、5000r/min离心10分钟,弃去上清。
4、加入10mlTE离心洗涤后,用10mlTE溶解菌体,混匀,-20℃保存备用。
5、取3.5ml菌悬液,加入184μl10%SDS,混匀,加入37μl10mg/ml蛋白酶K,混匀,37℃温育1小时
6、加入740μl5mol/LNaCl,再加入512μlCTAB/NaCl,混匀,65℃温育10分钟。
7、加入等体积的氯仿/异戊醇,混匀,10000r/min离心5分钟,保留上清。
8、上清中加入等体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),混匀,10000r/min离心5分钟,保留上清。
9、加入0.6倍的异丙醇,混匀,10000r/min离心5分钟,收集DNA沉淀,用70%乙醇离心洗涤DNA沉淀。
10、用1mlTE溶解DNA,加入终浓度为20μg/mlRNaseA,4℃保存。
CTAB/NaCl法提取的DNA纯度较高，蛋白杂质较少，保存时间长，编者更喜欢把终浓度为20μg/ml RnaseA加在第5步温育的时候，这样最后没有RnaseA污染。每一步操作细致一些，得到的DNA可用于Southern blot。
建议：长时间保存DNA可放于-20℃，但要尽量减少反复冻融，否则影响DNA质量。
三、盐析法
1、1.5ml对数期菌液
2、12000rpm 30 s
3、200ul裂解液（同CTAB/NaCl法），37c,1hr
4、66ul 5M NaCL,混匀充分，12000rpm 10min
5、上清用粗枪头取至新管
6、等体积酚充分混匀，12000rpm 3min，反复抽提至无蛋白层
7、取水层，等体积氯仿混匀，12000rpm 3min
8、上清至新管，2倍体积预冷无水乙醇
9、-20C，20min，14000rpm， 15min
10、400ul 70%冷乙醇洗涤
11、干燥，100ul 20ug/ml RNaseA，37C，30min
12、2倍体积无水乙醇沉淀，70%冷乙醇洗涤
13、干燥，溶于100ul TE
介于方法一和方法二之间，CTAB虽然取出糖分效果较好，但CTAB本身也是有毒的，所以此方法放弃了CTAB。
革兰氏阳性菌，由于细胞壁的结构与阴性菌有差别，裂解比阴性菌稍微麻烦一些，可以采取CTAB/NaCl法稍加修改，在第四步加入终浓度2mg/ml的溶菌酶，37度温育1h。
实验注意：提基因组最好要将枪头尖剪掉（剪掉以后在酒精灯上迅速过一下，使其断口圆滑）。以免枪头损伤基因组！抽干时最好是风干！
（转载，仅供参考）
本回答被网友采纳自行准备材料：无水乙醇、PBS水及1.5mL离心管。
取出析出液和洗涤液，按以下操作：
a) 析出液：4.5mL加入25.5mL无水乙醇；9mL加入51mL无水乙醇。
b) 洗涤液：9mL加入21mL无水乙醇；18mL加入42mL无水乙醇。
c) 配制好的析出液如出现沉淀，可在37℃溶解，摇匀后使用。
细菌处理：将收集的细菌5,000 rpm离心3分钟，弃上清，加入200μLPBS，振荡混匀，5,000 rpm离心3分钟，彻底弃上清。
a) 对于革兰氏阴性菌和一般的革兰氏阳性菌，加入200μL裂解液Ⅰ，悬浮沉淀，37℃放置30分钟。
b) 对于细菌壁较厚的革兰氏阳性菌、真菌、细菌芽孢等须首先自行进行破壁处理，处理结束后进行步骤5操作。
加入200 μL 裂解液Ⅱ，20μL消化液，充分振荡混匀，56℃水浴10 分钟。
加入600μL析出液，轻轻颠倒混匀，如有半透明悬浮物，不影响DNA的提取与后续实验。
将吸附柱放入收集管内，取上述溶液600μL转入吸附柱内，静置2 分钟，12,000 rpm 4℃离心1 分钟，弃收集管内废液。
将剩余400μL液体转入上述吸附柱内，重复操作步骤7。
将吸附柱放回收集管内，加500μL 洗涤液至吸附柱内，12,000 rpm 4℃离心1 分钟，弃收集管内废液。
将吸附柱放回收集管内，12,000 rpm 4℃离心2 分钟，离去残留的洗涤液。
取出吸附柱，放入新的1.5 mL 离心管内，加入50-200 μL 洗脱液，静置3分钟，12,000 rpm 4℃ 离心2分钟，收集DNA溶液。提取的DNA即可用于下一步实验或-20℃保存